大環(huán)內(nèi)酯類與氯霉素類藥物是兩類應(yīng)用廣泛的廣普抗生素,由于這兩類抗生素能夠有效預(yù)防和治療家畜傳染病和寄生蟲病的發(fā)生,有些還具有促進動物生長發(fā)育的功用。因此,為了降低養(yǎng)殖成本,提高經(jīng)濟效益,在家畜養(yǎng)殖中廣為使用。但是,近年來由于在禽畜養(yǎng)殖過程中過量使用抗生素又不遵守休藥期的規(guī)定,在牛羊肉、豬肉以及雞鴨魚肉中檢測出了各種抗生素。這種殘留可以通過食物鏈進入人體,進而對人體造成各種危害。紅霉素、泰樂菌素等大環(huán)內(nèi)酯類可致肝損害和聽覺障礙。更嚴重的是長期大量濫用廣譜抗生素會導(dǎo)致腸道微生物菌群被抑制,使人體產(chǎn)生抗藥性,這種抗藥性導(dǎo)致人類感染疾病之后治療難度加大,治療成本升高。 為了保障人類的生命健康,世界各國衛(wèi)生組織以及食品藥品監(jiān)督管理部門都已經(jīng)將肉食品中各種抗生素殘留量作了嚴格規(guī)定,并且以抗生素在肉食品中的殘留量作為產(chǎn)品進口的貿(mào)易壁壘,如美國和歐盟對阿維菌素在肉食品中的zui高殘留*為25ug/kg,泰勒菌素為100ug/kg,替米考星為100ug/kg,伊維菌素為40ug/kg。目前肉食品中大環(huán)內(nèi)酯類抗生素常用液一質(zhì)聯(lián)用進行全面分析。氯霉素類藥物常用氣相色譜及液相色譜分析。而用液相色譜法同時分析肉食品中兩類常見抗生素還未見文獻報道。
一、LC2100高壓恒流泵:2臺
uv2100紫外檢測器:1臺 N2000色譜工作站:1臺7725i手動進樣閥:1套
色譜工作站:1套
二、LC2100液相色譜儀特點
★采用世界上zui的光學檢測系統(tǒng)(安捷倫液相色譜檢測系統(tǒng)),交差光路設(shè)計
★輸液泵單向閥來源自世界zui的輸液泵技術(shù)
★ 傳承了美國瓦里安技術(shù),確保了泵的可靠性及穩(wěn)定性
★ 檢測器采用了安捷倫科技技術(shù)
★ 在國內(nèi)同行業(yè)真正不需換燈,實現(xiàn)全波長可變檢測分析
★ 智能化高,可實現(xiàn)網(wǎng)絡(luò)化平臺監(jiān)控,提高了你的QC效益。
★ 自動化,讓你從繁鎖的分析操作中解放出更多的時間!
技術(shù)特點
★ 輸液泵單向閥來源自瑞士進口、密封圈來自美國*、氘燈以及氘燈電源來自德國*、管路和各種接頭來源自美國*
★ 泵形式:串聯(lián)雙柱塞 浮動式密封圈;泵頭自沖洗功能,泵無須手動排空即可輸液
“自吸式單向閥"技術(shù),可延長密封圈使用壽命;
★ 程序化的溶劑類和壓縮因子,可自動補償;完整的預(yù)清洗功能,更于快速溶劑更換
★ 三條流量校正曲線以及*的多點參數(shù)校正,保障了*的流量準確性;
★ 梯度:高壓2-3元;梯度方式:高壓,梯度洗脫內(nèi)部軟件可自控制,可通過PC機及泵控制
★ 紫外檢測器具有自動波長定位調(diào)整,自動調(diào)零,多量程輸出選擇
★ D2燈(德國原裝):壽命3500小時,保證使用2000小時
流量范圍 | 0.001ml/min~ 10.000ml/min 分析型輸液泵 步長設(shè)定0.001ml/min |
0.01ml/min~ 20.00ml/min 小制備型輸液泵 步長設(shè)定0.01ml/min | |
0.02ml/min~ 80.00ml/min 半制備型輸液泵 步長設(shè)定0.01ml/min | |
0.1ml/min~ 200.00ml/min 制備型輸液泵 步長設(shè)定0.1ml/min | |
流量準確度 | 小制備以下時, 準確度<=±1%(1.0ml/min,8.5mpa,甲醇,室溫) |
半制備以上時, 準確度<=±1.5%(40.0ml/min,8.5mpa,甲醇,室溫) | |
流量穩(wěn)定性 | 小制備以下時,RSD<=0.25% |
半制備以上時,RSD<=0.7% | |
zui高工作壓力 | 分析型輸液泵: 40Mpa (0.001ml/min~ 10.000ml/min) |
小制備型輸液泵: 35Mpa (0.01ml/min~ 20.00ml/min) | |
半制備型輸液泵: 25Mpa (0.02ml/min~ 80.00ml/min ) | |
制備型輸液泵: 10Mpa (0.02ml/min~ 80.00ml/min ) | |
壓力脈動 | < 0.1Mpa (1.0ml/min,8.5mpa,甲醇,室溫) |
電源 | AC220 60HZ |
功耗 | 100W |
外形尺寸 | 360*260*170mm,13kg |
線性范圍 | 104 |
波長范圍 | 190nm-720nm |
波長重復(fù)性 | ±0.1nm |
波長準確度 | ±1nm |
譜帶寬度 | 6nm |
基線噪聲 | ≤±1×10-5AU (甲醇,1ml/min,254nm,20℃) |
基線漂移 | ≤±2×10-4AU/hr (甲醇,1ml/min,穩(wěn)定時間60min,254nm,20℃) |
基線噪聲 | ≤±0.5×10-5AU (空池,響應(yīng)時間1秒,20℃) |
基線漂移 | ≤±0.5×10-4AU/hr (空池,響應(yīng)時間1秒,穩(wěn)定時間60min,20℃) |
zui小檢測濃度 | ≤1×10-9g/ml(萘/甲醇溶液) |
流通池體積 | 分析型:10μL 小制備、半制備:5μL 制備型:3μL |
光程 | 10mm,5mm,3mm |
光源 | 可選氘燈/鎢燈 |
電源 | AC 110V/220V, 50Hz/60Hz |
功耗 | 100W |
外形尺寸(長×寬×高) | 360mm×260mm×170mm/10.0kg |
三、實驗
1 儀器與試劑
京科瑞達 LC-2100高壓恒流泵
uv2100紫外檢測器
超聲波清洗儀
反相色譜柱C18
固相萃取柱
泰樂菌素、替米考星、氯霉素、氟苯尼考標準品均為天津市科密歐化學試劑開發(fā)中心監(jiān)制
乙腈、正己烷均為優(yōu)級純
其它試劑均為分析純
實驗用水均為二次蒸餾水
新鮮牛肉與雞肉均為超市所購
2 色譜條件
C18反相色譜柱
柱溫25℃,流速1mL/min,進樣量25uL,梯度洗脫條件A相為甲醇,B相為0.2mol/L磷酸二氫鈉含10%(體積比)甲醇,調(diào)節(jié)pH為3.0,梯度洗脫程序:0-2min10%A,2-8min 10%-40%A,8-9min40%-10%A,檢測波長入為275nm
3 標準溶液的配制及標準曲線的制備
分別準確稱取各標準品0.01g(至0.001g),用甲醇分別溶解并定容至100mL,配制成100mg/L標準儲備液,于一4℃冰箱中冷藏,測定時將各標準溶液混合后稀釋成0.1、0.2、0.5、1.0、5.0、10.0、15.0、20.0mg/L的溶液。分別以泰樂菌素、替米考星、氯霉素、氟苯尼考峰面積為縱坐標,質(zhì)量濃度為橫坐標繪制標準曲線,計算回歸方程及相關(guān)系數(shù)(r)。
4 樣品處理
將新鮮牛肉及雞肉分別勻漿后,于-18℃冰箱中保存。測定時,將勻漿冷凍保存的牛肉與雞肉樣品于室溫下自然解凍。分別準確稱取20.0g樣品置于50mL具塞錐形瓶中,加入20mL乙腈,超聲10min,轉(zhuǎn)移至離心管,以5000r/min離心10min,收集上清液,離心沉淀物用上述方法重復(fù)提取2次,合并上清液。向得到的清夜中加入30mL正己烷,用力振蕩5min,靜置分層,棄去上層正己烷層。然后將溶液于40℃減壓旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)至約2mL,氮氣吹干后加入5mL甲醇一磷酸鹽混合液超聲溶解抗生素,定容至10mL?! ?/span>
5樣品凈化
將HLB固相萃取小柱用5mL甲醇、5mL去離子水活化后,將4得到的樣品處理液上固相萃取柱(柱流速保持1滴/s),用10mL蒸餾水、10mL5%甲醇水溶液淋洗固相萃取柱,再用10mL甲醇洗脫,將洗脫液用氮氣吹干后,加入流動相超聲定容至5mL,zui后,經(jīng)0.22um濾膜過濾后進樣?! ?/span>
6方法的準確度、精密度、線性范圍、回收率
對于牛肉樣品分別添加0.1、0.5、1.0mg/kg 3個水平的混合標準溶液,按照4與5樣品處理及凈化方法,每個水平平行測定4次,進行回收率實驗,并且以3倍信噪比分別計算泰樂菌素、替米考星、氯霉素、氟苯尼考在牛肉樣品中的檢出限,在測定條件下4種藥物在0.1—20mg/L范圍內(nèi)均呈線性,線性方程與相關(guān)系數(shù)、平均回收率、相對標準偏差見表
7、實際樣品檢測
本實驗分別對10份牛肉樣品和10份雞肉樣品中泰樂菌素、替米考星、氯霉素、氟苯尼考進行檢測,沒有發(fā)現(xiàn)牛肉樣品中含有以上抗生素,但是在4份雞肉樣品中都不同程度檢測到了泰樂菌素,zui高為200ug/kg,zui低為80ug/kg,平均含量為120ug/kg,高于我國動物性食品中獸藥zui高殘留*(100ug/kg)
我國動物性食品中獸藥zui高殘留*規(guī)定泰樂菌素、替米考星、氯霉素、氟苯尼考在肉品中的zui高殘留量(MRL)分別為100、75、1.5、200ug/kg,本實驗所測泰樂菌素、替米考星、氟苯尼考的檢出限分別為20、32、16ug/kg均在zui高殘留*以下,符合殘留檢測分析要求。由于氯霉素藥物特殊性,歐盟對氯霉素的檢出限要求為0.1ug/kg,美國FDA對氯霉素的檢出限要求為0.3ug/kg,按照本實驗方法,氯霉素檢出限為19ug/kg,還未達到上的要求,這是因為提取方法和所用檢測器所致。今后應(yīng)該發(fā)展更加靈敏的方法以提高氯霉 素。本實驗方法的平均回收率較高(75%-87%),而且步驟簡單、操作容易、重現(xiàn)性較好 相對標準偏差為1.35%-5.41%,表明方法穩(wěn)定可靠。
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